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【研究】使用活化石墨化碳芯片进行LC/MS和胰蛋白酶糖肽的MSMS分析

发布日期:2018-11-17 08:26 来源:活性炭网 作者:活性炭网 浏览数:

蛋白质糖基化具有重要的医学重要性,因为糖基化模式的变化与许多疾病有关。 因此,监测聚糖谱的潜在变化以及与糖基化位点相关的微观异质性在寻找疾病生物标志物中变得越来越重

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介绍

最近,一些研究表明,糖基化的异常变化在许多疾病的诊断和预后中可能是重要的。糖组学特征的改变与乳腺癌,1 - 3前列腺癌,4和卵巢癌有关。然而,监测与聚糖谱相关的变化不仅重要,还必须对蛋白质和肽水平相关的变化进行充分表征以更好地了解疾病进展。必须仔细监测糖链水平和微观异质性的糖基化位点(或位点)的变化。因此,监测糖蛋白及其糖基化位点的聚糖谱的变化在寻找疾病生物标志物中变得越来越重要。为了破译蛋白质糖基化位点的微观异质性,必须优化糖肽的分离以允许鉴定和表征源自酶促消化糖蛋白的所有糖肽。

活化的石墨化碳是另一种固定相,已用于分离亲水物质。活化的石墨化碳由或多或少完美的三维六方晶序组成,其通过石墨化热处理由非石墨碳制备。这种类型的介质允许有效保留亲水化合物,包括聚糖样品。活化石墨化碳的保留模式被认为是基于吸附6然而,分析物的电荷和大小也可能影响活化的石墨化碳介质的保留能力。7该介质具有比基于二氧化硅的固定相更宽的工作pH范围。据报道,活化的石墨化碳对酸和碱基本上是惰性的,允许在整个pH范围内进行分离8,从高酸性到高碱性。因此可以优化需要碱性pH值的分离。6它还具有高分离度,并且已知可以分解异构体和其他结构相关化合物。9单糖的端基异构体的分离10和寡糖的支化的异构体11已被证明与活化石墨化碳固定相。

通常,活化的石墨化碳已被用作用于使聚糖12包括磷酸肽的肽13脱盐的固相介质14它也被用作固定相对于聚糖的液体色谱分离,以及糖肽7和链霉蛋白酶消化的产物。8据观察,大豆凝集素和核糖核酸酶B的链霉蛋白酶消化的产品不是由下保温18然而,当使用活化的石墨化碳作为固定相时,保留并分离含聚糖的分析物。8

活化的石墨化碳固定相被耦合到用于从核糖核酸酶B.衍生的聚糖的检测和表征质谱15最近,从促红细胞生成素的酶Glu-C消化衍生的聚糖,以及糖用活化的石墨化碳作为进行了研究用于LC / MS分析的固定相。16 ; 17最近,一种双列建立已被描述为配置文件从人血清中得到的N-聚糖。18在这种配置中,活化的石墨化碳柱设置在平行于一个C 18柱。这样不仅可以快速分析聚糖,还可以快速分析多肽,从而实现高通量。

而链霉蛋白酶的使用有利于聚糖分析,6 ; 19关于聚糖及其相关的糖基化位点信息丢失。因此,可能无法实现使用该方法完全表征糖肽。在试图进一步推进糖肽的分析,我们已经调查都激活石墨化碳和传统C的性能18装在芯片用于分析胰蛋白酶的糖肽的固定相。通过使用胰蛋白酶肽,存在足够长的氨基酸链,当采用适当的串联MS片段化技术如电子转移解离(ETD)时,其允许确定氨基酸序列和随后的糖基化位点。

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实验方法

物料

牛核糖核酸酶B,牛胎球蛋白,辣根过氧化物酶,人触珠蛋白,TPCK处理的胰蛋白酶,甲酸(95-97%),盐酸胍和碳酸氢铵购自Sigma Chemical Co.(St.Louis,MO)。二硫苏糖醇(DTT)和碘乙酰胺(IAA)从Bio-Rad Laboratories(Hercules,CA)获得。高纯水(18MΩ)和乙腈是EMD Laboratories(Gibbstown,NJ)的产品。

胰蛋白酶消化

使用在50mM碳酸氢铵缓冲液中制备的6M盐酸胍和10mM DTT,将模型糖蛋白(2.0-5.0μg)同时变性并在50℃下还原1小时。然后使糖蛋白样品冷却至室温,然后加入碘乙酰胺至终浓度为25mM。将还原的半胱氨酸残基在室温下在黑暗中烷基化1小时。通过添加50mM碳酸氢铵缓冲液将最终消化体积调节至300μl。以1:30质量的胰蛋白酶与蛋白质的比例添加胰蛋白酶。使消化在37℃下进行18小时。通过将所得肽溶液的pH调节至约10℃来淬灭消化反应。3,使用甲酸。

LC-MS / MS

在该研究中使用Agilent ChipCube LC / MS接口(Agilent Technologies,Inc.Palo Alto,CA)。通过使用Agilent 1200系列纳米泵系统(Agilent Technologies,Inc.,Palo Alto,CA)完成液相色谱分离。该系统包括用于装载样品的二元毛细管流泵和用于纳流分离的纳流级梯度泵。流动相用真空脱气机(Agilent Technologies,Inc.Palo Alto,CA)脱气,而样品通过自动进样器注入。液相色谱芯片含有活化的石墨化碳或C 18(5μmStableBondZorbax)同时使用捕获和分离介质。每个芯片包含40nl捕获柱和75μm×43mm分离柱。使用3%B至45%B的线性梯度在45分钟内以300nl / min的流速进行液相色谱分离。流动相A由97%/ 3%/ 0.1%水/乙腈/甲酸组成,而流动相B由97%/ 3%/ 0.1%乙腈/水/甲酸组成。相同的流动相用于毛细管和纳流泵。使用以2μl/ min流速操作的毛细管流动泵注射1μl(500fmol至1pmol)的胰蛋白酶肽样品。注射/洗涤循环的总体积为4μl(1μl注射肽,然后是3μl流动相A)。

使用配备有用于电子转移解离(ETD)的负化学电离源的Bruker Daltonics(Bruker Daltonik GmbH,Bremen,Germany)超高容量离子阱质谱仪检测和鉴定分离的肽/糖肽。电喷雾离子化,用1825 V(活化的石墨化碳芯片)或1975 V(C的喷雾电压完成18芯片)。标准“增强”模式用于MS分析,而“超扫描”模式用于串联MS分析。米/z扫描范围设定为200-3000。对于大多数实验,通过精确质量和碰撞诱导解离(CID)数据确认糖肽的身份。然而,在无效CID片段化的情况下,使用ETD来片段化肽骨架。在后者的情况下,所采用的条件是最佳的,如我们最近所述。20简言之,内部产生的荧蒽基团,使用的65℃,65电子伏特的电离能的反应物的温度,和5.0μA,发射电流。自由基在捕集阱中累积7.5毫秒,并允许与糖肽离子反应150毫秒。

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结果和讨论

ChipCube接口

最近,安捷伦科技公司推出了一种基于聚酰亚胺芯片的新型商用分离系统。芯片由两个阀门转子(内转子和外转子)以及捕集和分离柱组成。目前仅使用内转子。连接到阀门的是40-nl捕集柱,其填充的材料与分离柱相同。还连接到柱上的是纳电喷雾发射器。通过将所有组件集成到单个芯片中,可以最大限度地减少手动连接和死体积。最近已经详细描述了芯片的制造和应用。21

再现性和可重复性

使用两种糖肽检测活化的石墨化碳固定相用于胰蛋白酶糖蛋白分析的再现性和可重复性:来自牛核糖核酸酶B 的Man 5 -SRNLTK糖肽和来自辣根过氧化物酶的GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl)-NVGLNR 。结果如图1a和1b所示对于核糖核酸酶B衍生的糖肽和辣根过氧化物酶衍生的糖肽,分别如此。对每种糖肽进行10次每次分析。对于核糖核酸酶B,所有分析均以单一序列进行,每次注射使用500-fmol等份的胰蛋白酶消化物。辣根过氧化物酶分析在两天内以两个序列进行,以监测芯片的日常重现性和可重复性。该糖肽的每个序列由5次分析组成,每次注射使用500fmol的胰蛋白酶消化。

 
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图1

提取离子色谱图描绘了活化石墨化碳的保留时间重现性和重复性,用于(a)源自牛核糖核酸酶B的胰蛋白酶消化的糖肽SRNLTK-GlcNAc 2 Man 5,和(b)糖肽NVGLNR-GlcNAc 2(Fuc) Man 3(Xyl)衍生自辣根过氧化物酶的胰蛋白酶消化。核糖核酸酶B胰蛋白酶消化物(500fmol)在一天内注射10次,而辣根过氧化物酶胰蛋白酶消化物(500fmol)在两天内注射10次(每天5次注射)。

对于核糖核酸酶B糖肽的10次分析,平均保留时间为19.2分钟±0.1分钟(图1a)。最短保留时间为19.1分钟,而最长保留时间为19.4分钟(2次分析)。这些结果表明活化的石墨化碳的注射 - 注射重复性是优异的。我们还检查了两天注射到注射的可重复性。使用辣根过氧化物酶的胰蛋白酶消化物评估了这一点。在这种情况下,在两天内进行10次注射(每天5次注射)。第一天达到的平均保留时间为12.1分钟±0.1分钟(图1b)。最短保留时间为12.0分钟,而最长保留时间为12.3分钟。第二天的注射也是非常可重复的,平均保留时间为11.8分钟±0.1分钟。此处,最短保留时间为11.6分钟,最长保留时间为11.9分钟。然而,两天之间的平均保留时间有半分钟的变化,这可能归因于温度波动。在活化的石墨化碳介质上获得的分离似乎是高度依赖于温度的。然而,考虑到所有10次注射,两天内的平均保留时间为11.8min±0.1min。因此,注射 - 注射保留时间重复性不仅看起来很好,而且日常再现性也很好。

确定活化的石墨化碳芯片的注射 - 注入残留非常低,而同一芯片的回收效率非常高。这些是从图1所示的提取离子色谱图强度的高重复性推断出来的对于衍生自核糖核酸酶B的糖肽,平均强度为(6.5±0.4)×10 7计数,由提取离子色谱图的积分确定。最低观察值为5.9×10 7计数,而最高值为7.1×10 7计数。基于提取离子色谱图,第一序列的辣根过氧化物酶糖肽的平均强度为(3.5±0.3)×10 7计数。

牛核糖核酸酶B的分析

核糖核酸酶B是一种糖蛋白,在N 60具有单个N-糖基化位点,具有5个高甘露糖聚糖结构(GlcNAc 2Man 5-9)。胰蛋白酶消化该蛋白质产生小的亲水性糖肽,其具有SRNLTK的氨基酸序列(1个错过的切割)。因为其亲水性的,这糖肽没有通过C被困18芯片,并冲出的废线(数据未示出)。然而,当使用活化的石墨化碳芯片进行分析时,检测到肽骨架的所有5种糖形式(图2)。有趣的是,Man 5糖肽保留最多。男人6糖肽是第二保留的,并且与Man 5糖肽很好地分离剩余的三种糖肽没有很好地分辨,但在Man 6糖肽之前洗脱(参见图2)。核糖核酸酶B糖肽的这种洗脱顺序与先前公布的数据8一致,其中具有N或NL氨基酸序列的链霉蛋白酶核糖核酸酶B糖肽在4.6×100mm Hypercarb柱上分离。这项工作表明,聚糖结构和肽骨架都与活化的石墨化碳固定相相互作用。据报道,GlcNAc 2 -Man 6 -N在GlcNAc 2 -Man 5之前洗脱在GlcNAc 2 -Man 5 -NL 之前洗脱-N和GlcNAc 2 -Man 6 -NL。两种氨基酸 - 肽保留得更强。据报道只有Man 5和Man 6糖肽,这两种糖肽最丰富; 尽管如此,报告的洗脱顺序与此处观察到的洗脱顺序一致。洗脱曲线如图2所示表明所示的分离是聚糖部分与活化的石墨化碳固定相之间亲水相互作用的结果。此外,结果还表明肽骨架基本上不参与相互作用,因为分离主要基于与肽骨架连接的聚糖部分的大小。

 
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图2

来自牛核糖核酸酶B的胰蛋白酶消化的糖肽的提取离子色谱图,并使用活化的石墨化碳芯片进行分析。插图,Man 5附着的糖肽的CID光谱

核糖核酸酶B糖肽的碰撞诱导解离提供了足以证实糖肽特性的信息。图2的插图描绘了三质子化的Man 5糖肽的CID光谱在串联质谱中存在几种诊断离子,因此证实了Man 5糖肽的特性。电喷雾电离产生三重和双质子化离子,其m / z值分别为645.9和968.0。在CID光谱中,产物离子为m / z204.5是对应于GlcNAc残基的聚糖氧鎓离子。所有5个甘露糖残基的丢失,仅留下与肽骨架连接的核心2GlcNAc残基,由m / z 375.9 处的三重质子化产物离子证明。m / z值为429.2,483.7,537.7和591.7 的三重质子化离子系列均被54分开,分别对应于4,3,2或1个甘露糖残基的连续损失。m / z 464.4 处观察到仅具有单个GlcNAc残基的肽骨架作为双质子化产物离子。在CID光谱中也观察到m / z值为724.9,806.3和886.4 的双质子化产物离子系列每个离子间隔81 米/z单位。这些离子分别由3个,2个或1个甘露糖残基的损失产生。m / z 921.6 处的单质子化产物离子是与GlcNAc残基连接的肽骨架的离子对于Man 6-9糖肽也观察到类似的CID数据(数据未显示),因此允许鉴定图2所示的糖肽

辣根过氧化物酶的分析

辣根过氧化物酶是具有8个糖基化位点的糖蛋白。据报道,与该蛋白质相关的主要聚糖是GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl),相对于其他已知的聚糖结构存在70%的丰度。22

对活化的石墨化碳芯片上的辣根过氧化物酶胰蛋白酶消化物的分析导致成功鉴定了来自4个糖肽的8个糖基化位点中的5个。其中一种鉴定的糖肽含有两个糖基化位点。的C 18芯片只能够保持单一的糖肽,其也与活化的石墨化碳芯片观察除了其他3个糖肽。在使用活化的石墨化碳鉴定的糖肽中,我们能够通过CID确认仅一种的同一性,而其他的导致差的CID数据。因此,这里使用ETD来验证这些糖肽的氨基酸序列。

使用活化的石墨化碳芯片的GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl)聚糖结构的糖肽NVGLNR的提取离子色谱图如图3所示该糖肽具有非常短的肽骨架(6个氨基酸)并且非常亲水。相关的聚糖只能增加糖肽的总体亲水性。因此,该糖肽被有效活化的石墨化碳芯片(保留图3),但是没有被下保温18(未示出数据)芯片。

 
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图3

从辣根过氧化物酶衍生的胰蛋白酶糖肽NVGLNR-GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl)的提取离子色谱图,并用活化的石墨化碳芯片分析。插图,糖肽的CID光谱。

对于m / z值922.1(理论m / z为922.4)获得的该糖肽的CID光谱图3的插图中描绘m / z 366.1 处的产物离子表示对应于GlcNAc-Man的聚糖氧鎓离子,而m / z值为528.2和690.2的产物离子分别代表GlcNAc-Man 2和GlcNAc-Man 3结构。m / z 822.3 处的离子代表GlcNAc-Man 3 -Xyl,而m / z值为539.7,620.9,701.9和782.9 的一系列双质子化离子对应于具有GlcNAc 2的肽。核心,以及分别顺序添加1,2或3个甘露糖残基。m / z 767.5 处的离子代表岩藻糖和1甘露糖单元的损失。存在于m / z 848.3 的离子是由来自糖肽的核心岩藻糖的损失引起的。m / z 1078.6 处观察到的产物离子源自保留核心GlcNAc残基的肽骨架,而在m / z 875.5 处的产物离子表示具有单个GlcNAc残基的肽骨架。来自肽骨架的碳水化合物结构的完全损失在CID光谱中由在m / z处观察到的产物离子表示672.3。基于芯片的分析产生的CID光谱与先前公布的使用传统纳米LC柱和纳米喷雾源分析的相同糖肽的结果几乎相同。22 - 24

仅使用活化的石墨化碳固定相观察到另外两种辣根过氧化物酶糖肽。图4说明了双核糖基化的糖肽(LYNFSNTGLPDPTLNTTYLQTLR)的提取离子色谱图,其中GlcNAc 2(Xyl)Man 3(Fuc)聚糖结构在N 216和N 228处连接这种糖肽的保留时间是...49分钟,仅在85%流动相B洗涤期间从柱中洗脱。这种特殊的糖肽产生了难以解释的CID谱,很可能是由于其两个糖基化位点。该肽上存在两个聚糖结构可能导致复杂的片段化途径,产生难以解释的谱(数据未显示)。观察到的该糖肽的m / z值为1274.1,而理论值为1274.3。为了验证该糖肽的氨基酸序列,使用ETD。该糖肽的ETD串联MS谱产生一系列z 来自z的离子4-8一系列的C”的离子也从C本' 3-8和c' 10由于在该肽的第九位存在脯氨酸,未观察到c'9离子。存在足够的信息以准确推断出该肽的氨基酸序列。由于M / Z的C”的3离子,1579.5,第一个糖基化位被确定。不幸的是,仅这一数据不允许确定该肽的第二糖基化位点。为了明确地定位与该糖肽相关的第二个位点,z 必须识别9离子,在这种情况下不是。

 
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图4

辣根过氧化物酶胰蛋白酶胰蛋白酶LYNFSNTGLPDPTLNTTYLQTLR的提取离子色谱图,其中附着有GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl)聚糖结构。插图,糖肽的ETD串联质谱。

在被激活的石墨化碳分析(观察到的第二糖肽图5a)和不是在C 18图5b)具有其中的GlcNAc LHFHDCFVNGCDASILLDNTTSFR的氨基酸序列2(Fuc的)曼3(的Xyl)聚糖结构附接。该糖肽不产生信息性CID或ETD光谱。因此,使用精确质量来鉴定该糖肽。观察到的该糖肽的m / z值为1299.9,而理论值为1300.2。观察到的和理论m / z之间的变化在这里使用的质量精度内。

 
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图5

胰蛋白酶的糖肽的提取离子色谱图LHFHDCFVNGCDASILLDNTTSFR-GlcNAc的2(Fuc的)曼3(的Xyl)从辣根过氧化物酶衍生和分析使用活化的石墨化碳的(a)和C 18(b)中的芯片。通过精确质量匹配鉴定该肽。

牛胎球蛋白的分析

牛胎球蛋白是具有3个N-糖基化位点的糖蛋白。胰蛋白酶消化产生具有15,28和32个氨基酸的大糖肽。与这些糖基化位点相关的聚糖是复合型单 - ,二 - ,三 - 和四唾液酸化的。当将500fmol的胰蛋白酶消化物注射到活化的石墨化碳芯片上时,未检测到任何糖肽(数据未显示)。这些大的糖肽显然太疏水而不能从活化的石墨化碳固定相中有效地洗脱。只有当C 18芯片采用,检测到N-糖基化的位点3和4点O-糖基化的(图6)。观察到具有不同微观异质性的糖肽,导致鉴定出16种不同的糖肽。此外,这些胎球蛋白糖肽的CID光谱证实了糖基化(参见图6的插图)。m / z 1470.1 处的糖肽具有与VVHAVEVALATFNAESNGSYLQLVEISR氨基酸序列相关的三唾液酸化三触角聚糖结构。对于该糖肽,m / z 657.3 处的产物离子是对应于GlcNAc-Gal-NeuNac残基的常见氧鎓离子。该氧鎓离子的损失产生在m / z 1741.5 处观察到的三重质子化产物离子一个天线和一个额外的唾液酸的损失导致形成具有m / z的三重质子化产物离子价值1644.4。两个天线的损失导致在m / z 1522.2 处检测到三质子化离子最后,当天线,唾液酸残基和甘露糖残基丢失时,观察到m / z值为1590.4 的三重质子化离子

 
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图6

胰蛋白酶的糖肽的提取离子色谱图GLIQSDQELFSSPNATDTIPLVR-GlcNAc的2(Fuc的)曼3(的Xyl)从辣根过氧化物酶衍生的和用C分析18芯片。插图,糖肽的CID光谱。

据此前报道,从胎球蛋白的胰蛋白酶消化糖肽原可以在激活的石墨化碳,分开7,但这些糖肽拥有错过了分裂。使用该出版物中描述的方法,计算此处分析的所有糖肽的疏水性/亲水性指数(表1)。根据疏水性/亲水性指数,具有更多负值的肽更具疏水性,而具有更多正值的肽更具亲水性或更少疏水性。疏水性/亲水性指数仅考虑肽骨架,并且不考虑聚糖部分归因于什么。

表格1

源自模型糖肽的胰蛋白酶糖肽通过LC-MS / MS分析,使用活化的石墨化碳和C 18 LC芯片。

蛋白 观察到m / z
活化的
石墨
化碳
观察到
m / z C 18
亲水性/ 
疏水性
指数值
保留
时间
(分钟)C 18
保留
时间(分钟)激活
石墨化碳

核糖核酸酶B.          
SRNTLK-GlcNAc 2男子5 645.5(+3),
968.3(+2)
ND 183 ND 16.3
SRNLTK-GlcNAc 2 Man 6 699.2(+3),
1049.2(+2)
ND 183 ND 14.8
SRNLTK-GlcNAc 2男子7 753.3(+3),
1130.2(+2)
ND 183 ND 13.8
SRNLTK-GlcNAc 2男子8 807.3(+3),
1211.3(+2)
ND 183 ND 13.8
SRNLTK-GlcNAc 2男子9 861.3(+3),
1292.3(+2)
ND 183 ND 13.7

辣根过氧化物酶          
NVGLNR-GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl) 922.3(+2) ND 146 ND 9.9
LYNFSNTGLPDPTLNTTYLQTLR- 
GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl)
1247.7(+4) ND -233 ND 10.6
LHFHDCFVNGCDASILLDNTTSFR- 
GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl)
1299.9(+3) ND -102 ND 49.5
GLIQSDQELFSSPNATDTIPLVR- 
GlcNAc 2(Fuc)Man 3(Xyl)
1274.4(+3) 1274.3(+3) -85 15.7 23.5

胎球蛋白          
LCPDCLLAPLNDSR-T3S a ND 1534.6(+3) -170 30.5 ND
VVHAVEVALATFNAESNGSYLQLVEISR-T3Sa ND 1470.1(+4) -94 36.4 ND
RPTGEVYDIEIDTLETTCHVLDPTPLANCSVR-T3S a ND 1634.1(+4) -53 38.0 ND
一个 T3S- trisialo,三触角复杂聚糖

当比较辣根过氧化物酶和胎球蛋白的疏水性/亲水性指数值时,使用活化石墨碎片分离的辣根过氧化物酶的三个糖肽骨架具有比胎球蛋白糖肽更低的疏水性/亲水性指数值(-232,-102和-83)。具有RPTGEVYDIEIDTLETTCHVLDPTPLANCSVR的肽序列(疏水性/亲水性指数值为-55)。根据这种疏水性/亲水性指数,胎球蛋白衍生的糖肽应该在活化的石墨化碳芯片上分离。然而,使用活化的石墨化碳芯片未检测到该糖肽。因此,我们认为与肽连接的聚糖归因于糖肽在固定相上的保留。辣根过氧化物酶仅具有小的非唾液酸化结构,而更大的唾液酸化聚糖与胎球蛋白骨架连接。在我们的流动相条件下(0.1%甲酸,戴维斯等。使用不与ESI相容的0.1三氟乙酸),唾液酸的羧酸酯基团不具有任何电荷,因此它们的总疏水性将增加。反相C 18证明了这一点色谱法,其中相同的糖肽将根据与其聚糖相关的唾液酸基团的数量洗脱; 具有单唾液酸化聚糖的糖肽将在具有二唾液酸化聚糖的糖肽之前洗脱,该聚糖将在具有三唾液酸化聚糖的糖肽之前洗脱。(数据未显示。)因此,我们认为唾液酸基团的存在显着促进了糖肽在此处使用的酸性条件下的疏水性,从而防止胎儿糖肽在本工作中使用的LC条件下从活化的石墨化碳芯片中洗脱。

迄今为止,从这些模型的糖蛋白,在汇总的结果表1,表明具有短的肽主链(6个氨基酸长)的糖肽是公由活化的石墨化碳芯片保留,但不能被C 18而且,随着适度长的肽主链(23-24个氨基酸,不同之处有14个氨基酸长的胎球蛋白糖肽衍生当一个C这是仅检测到糖肽18是采用固定相)也由活化的石墨化碳芯片观察到,但也可以由C 18保留然而,具有长肽骨架(28-32个氨基酸长)和唾液酸化聚糖结构的糖肽未被活化的石墨化碳鉴定,并且只能使用C检测和鉴定。18芯片。这表明实现了复杂的糖肽样品,两个分析应利用两种不同介质(活化的石墨化碳和C进行的综合分析18),从而允许亲水性和疏水性的糖肽的保留。

肽混合物的分析:活化的石墨化碳v.C 18

而更小,更亲水性的糖肽可以使用激活的石墨化碳芯片来表征,并且可以不使用C来实现18,许多其它的肽使用活化石墨化碳芯片还确定。为了比较两种固定相,制备由人触珠蛋白,牛胎球蛋白,辣根过氧化物酶和牛核糖核酸酶B组成的4-蛋白质混合物。混合物中每种蛋白质的浓度为100fmol /μl,同时注射并分析该混合物的1μl等分试样。使用MASCOT鉴定肽; 因此,未鉴定出糖肽。然而,它们包括在序列覆盖率的计算中。表2总结了4-蛋白质混合物的MASCOT结果

表2

由活化的石墨化碳和C分析的肽18级从4蛋白质混合物的芯片,并且通过MASCOT识别(100飞摩尔/μl的各蛋白质,1微升注入)。显示了鉴定的肽的MASCOT离子评分和每种蛋白质的总离子评分。色谱数据(保留时间和峰宽)仅适用于两个固定相之间常见的那些肽。

OBS 先生(EXP) 先生(CAL) 离子分数
石墨
离子
分数
C18
保留
时间
石墨
(分钟)


石墨
保留
时间C18 
(分钟)


C18
人类触珠蛋白
462.31 922.61 922.52 ILGGHLDAK ND 46        
490.85 979.69 979.49 VGYVSGWGR 58 54 43.6 1.6 25.6 0.6
522.86 1043.7 1043.6 VMPICLPSK 31 ND        
573.84 1145.7 1145.5 HYEGSTVPEK 48 ND        
602.39 1202.8 1202.6 VTSIQDWVQK 81 81 35.5 0.7 28.2 0.5
645.89 1289.8 1289.7 DIAPTLTLYVGK 78 ND        
673.43 1344.9 1344.6 SCAVAEYGVYVK 61 56 39 1.0 26.7 0.7
463.32 1386.9 1386.7 LPECEAVCGKPK ND 33        
720.39 1438.8 1438.7 TEGDGVYTLNNEK ND 83        
854.58 1707.2 1706.8 YVMLPVADQDQCIR 107 92 44.4 1.2 30.3 0.6
599.4 1795.2 1794 VVLHPNYSQVDIGLIK 80 ND        
612.61 1834.8 1833.9 VMPICLPSKDYAEVGR 41 41 35.6 0.7 29.8 0.5
620.33 1858年 1856.9 AVGDKLPECEAVCGKPK 83 85 22.8 0.8 21.1 0.4
1087.12 2172.2 2171.1 SPVGVQPILNEHTFCAGMSK 111 109 33.3 1.0 30.5 0.5
      总离子得分 779 680        
牛胎儿
577.9 1153.8 1153.6 HTLNQIDSVK 69 49 19.1 1.3 20.1 0.5
635.5 1269 1268.6 QDGQFSVLFTK 70 70 34.2 1.1 31.9 0.5
738.28 1474.6 1473.8 TPIVGQPSIPGGPVR 84 51 31.1 1.8 27.5 0.7
501.78 1502.3 1501.8 GYKHTLNQIDSVK 50 52 23.9 0.8 21 0.4
565.28 1692.8 1691.9 HTLNQIDSVKVWPR 66 69 37.8 1.2 27.4 0.5
660.41 1978.2 1976.9 QQTQHAVEGDCDIHVLK 53 62 25.8 1 22.4 0.6
707.61 2119.8 2119 HTFSGVASVESSSGEAFHVGK 113 95 37.4 1.5 26.8 0.5
840.96 2519.9 2518.3 AQFVPLPVSVSVEFAVAATDCIAK ND 65        
      总离子得分 505 513        
辣根过氧化物酶
468.31 934.61 934.48 TPTIFDNK 41 46 20.7 0.6 24.6 0.5
480.3 958.59 958.51 DTIVNELR 63 49 25.3 0.9 20.2 0.4
511.78 1021.6 1021.5 DAFGNANSAR 65 ND        
593.36 1184.7 1184.6 YYVNLEEQK 66 66 31 0.9 24.6 0.6
691.37 1380.7 1380.7 STIQQAFQSDTR ND 94        
690.91 1379.8 1379.6 TEKDAFGNANSAR 64 ND        
738.84 1475.7 1474.7 SSDLVALSGGHTFGK 73 66 28.9 0.6 27.5 0.7
793.95 1585.9 1585.8 MGNITPLTGTQGQIR 111 99 29.4 0.8 27.2 0.4
701.85 2102.5 2101 TPTIFDNKYYVNLEEQK 45 ND        
749.95 2246.8 2246.1 FSAVGLNTNDLVALSGAHTFGR ND 81        
868.71 2603.1 2601.3 TVSCADLLTIAAQQSVTLAGGPSWR ND 44        
      总离子得分 528 545        
牛核糖核酸酶B.
742.42 2224.2 2223.1 HIIVACEGNPYVPVHFDASV ND 104        
789.41 2365.2 2363.9 QHMDSSTSAASSSNYCNQMMK 66 59 34.7 1.6 21.4 0.8
840.31 2517.9 2516.2 CKPVNTFVHESLADVQAVCSQK 82 81 31.7 1.4 30.1 0.5
      总离子得分 148 244        

有趣的是,在许多情况下,两种不同的固定相产生非常相似的结果。在许多情况下,观察到的序列覆盖率和MASCOT总离子分数之间的差异似乎并不显着。通过两种固定相分析的4-蛋白质混合物获得的结果证明了这些观察结果。从混合物中,使用活化的石墨化碳芯片(由MASCOT鉴定11个和手动鉴定的2个糖肽主链)鉴定了总共13个来自触珠蛋白的肽主链,而使用C18鉴定了总共12 个。芯片(由MASCOT鉴定的10个和手动鉴定的相同的2个糖肽主链)。这两个阶段共有9个共同的肽骨架,其中7个通过MASCOT鉴定,而剩余的两个糖肽骨架是人工鉴定的。将活化的石墨化碳芯片能够识别未使用C 4个观察到的肽骨架18,而C 18能够识别3个独特的肽主链。两种芯片都能够鉴定触珠蛋白的4个糖基化位点中的3个。在两个阶段中,用多种糖形式观察到含有N 207和N 211的双糖基化肽骨架此外,两种芯片还能够鉴定具有N 241的糖肽,有多种糖型。无论是芯片导致在N个识别的N-糖基化位点的184当触珠蛋白的所有识别出的肽主链被认为是,包括那些由MASCOT和人工识别糖肽鉴定,活化的石墨化碳芯片产生了41%的序列覆盖,而被使用C观察到的40%的序列覆盖18芯片。使用激活的石墨化碳芯片通过MASCOT鉴定的肽导致的779总离子评分,而使用C达到18芯片稍微在680以下。

与触珠蛋白相似,使用两个相观察到由MASCOT鉴定的胎球蛋白肽主链的大量重叠。当被激活时石墨化碳被用作固定相介质,7个的肽主链进行鉴别,而C 8时被确定18被使用。确定用于分析所有的肽主链使用活化的石墨化碳为C时固定相也被鉴定18被使用。尽管MASCOT结果对于天然肽非常相似,但是对于糖肽的分析获得了显着不同的结果。使用活化的石墨化碳芯片未鉴定出N-或O-糖基化位点。器,利用C 18芯片,糖肽具有在N个的3个点的N-糖基化的通过人工检查鉴定了99,N 156和N 176多种糖型。除了N-糖基化位点外,还手动鉴定了O 271,O 280,O 282和O 341处的O-糖基化的4个位点在2种不同的肽骨架上观察到O-糖基化位点; 一个O-糖肽含有3个O-糖基化位点,并且用多种糖形式观察到。总体而言,序列覆盖率为27%,MASCOT总离子评分为505,这是由于使用活化的石墨化碳芯片进行分离。由于添加了糖肽主链,当C 18时,总序列覆盖率增加至71%被利用了。然而,由于MASCOT未鉴定出这些肽,因此仅得到总离子评分的适度增加( 513)。

类似地,两种固定相的辣根过氧化物酶分析是相当的。MASCOT搜索串联MS数据鉴定了每种固定相的5种常见肽主链和3种独特的肽主链。如前所述,从活化的石墨化碳分析中手动鉴定了另外4个糖肽主链。只有这些糖肽支柱之一可能为C观察18分析。总体而言,当所确定的所有的肽主链被认为是,通过激活的石墨化碳芯片产生的序列覆盖率为55%,而作为C 18芯片率为32%。的MASCOT总离子评分均用于激活石墨化碳和C 528和370 18分别芯片,。

核糖核酸酶B是一种小得多的蛋白质,每个芯片共鉴定出3种肽。对于使用活化的石墨化碳的分析,MASCOT鉴定了两种肽。通过人工检查鉴定对应于单个糖基化位点的5种糖型。通过MASCOT用于激活石墨化碳分析鉴定的两个肽在C还查明18分析,具有单个独特肽一起。总体而言,使用活化的石墨化碳芯片进行分析得出40%的序列覆盖率。当使用C 18芯片时,该值增加到52%MASCOT总离子评分分别为148和244,用于激活石墨化碳和C 18分别。

两个阶段之间存在几种色谱差异。图7a描绘了使用活化的石墨化碳进行分析的基峰色谱,而C 18分析显示在图7b中活化的石墨化碳产生的色谱峰明显更宽。虽然观察到峰宽窄至0.6分钟,但大多数峰的宽度为约10分钟。1分钟。一些峰具有在1.2分钟的宽度,具有最宽的峰是用于当C来自核糖核酸酶B.衍生QHMDSSTSAASSSNYCNQMMK 1.6分钟18被采用,峰宽范围从0.4分钟至0.8分钟。使用C分析的肽18具有0.5分钟的平均峰宽。

 
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图7

4蛋白质混合物的基峰色谱获得使用活化的石墨化碳的(a)和C 18(b)中的芯片。每种蛋白质的浓度为100fmol /μl,每种情况下注射1μl。

在大多数情况下,MASCOT鉴定的肽被活化的石墨化碳保留的时间更长,平均接近6分钟。对于更多由活化的石墨化碳保留的肽,保留时间增加1.7分钟,最多18分钟。仅鉴定了两种常见的肽,来自牛胎球蛋白的HTLNQIDSVK和来自辣根过氧化物酶的TPTIFDNK,分别在活化的石墨化碳中洗脱1.0和3.9分钟。色谱峰宽和保留时间的比较包括在表2中

去:

结论

使用基于芯片的LC / ESI界面分析来自模型糖蛋白的几种胰蛋白酶糖肽。芯片用活化的石墨化碳或C 18填充同样的介质用于捕获和分离。具有短至中等长度肽骨架的糖肽,如衍生自核糖核酸酶B和辣根过氧化物酶的糖肽,在活化的石墨化碳介质上更好地保留和分离。使用C当分析tryptically消化的核糖核酸酶乙18芯片,未检测到有与糖基化的位点相关联的5个糖型。使用活化的石墨化碳芯片成功地检测和鉴定了所有这些。类似地,当辣根过氧化物酶的糖肽用一个C分析18芯片,1糖肽被检测和鉴定。当使用活化的石墨化碳芯片时,仅检测和鉴定了另外三种糖肽。虽然活化的石墨化碳似乎可有效地保留和分离较小的,更亲水的糖肽,但对于所有糖肽分析而言,它不是合适的固定相。当用活化的石墨化碳芯片分析经过胰蛋白酶消化的牛胎球蛋白时,没有检测到或鉴定出更大,更疏水的糖肽。这些糖肽只能使用C被检测和识别18芯片。此外,还发现,梯度类似于那些用于对C 18反相分离适用于活化的石墨化碳固定相。因此,必须采用两种固定相来全面表征蛋白质的糖基化。这需要2次单独分析,但相当于使用阳离子交换进行更传统的多维色谱分离,然后进行反相LC / MS。此外,许多相同的肽主链的鉴定使用C 18当使用活化的石墨化碳时,也确定了。当仅考虑通过MASCOT鉴定的那些肽时,观察到类似的MASCOT总离子评分以及可比较的序列覆盖。通常,活化的石墨化碳更多地保留肽,平均为6分钟,并产生更宽的色谱峰。


(责任编辑:活性炭网)
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